Ova studija pokazuje da je gljivica Kosakonia oryziphila NP19, izolirana iz korijena riže, obećavajući biopesticid koji potiče rast biljaka i biohemijsko sredstvo za kontrolu plamenjače riže. In vitro eksperimenti provedeni su na svježim listovima aromatičnih sadnica riže Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Rezultati su pokazali da NP19 efikasno inhibira klijanje konidija gljivice uzrokovane plamenjačom riže. Gljivična infekcija je inhibirana pod tri različita uslova tretmana: inokulacija riže sa NP19 i gljivičnim konidijama; istovremena inokulacija lista sa NP19 i gljivičnim konidijama; i inokulacija lista gljivičnim konidijama nakon čega slijedi tretman sa NP19 30 sati kasnije. Nadalje, NP19 je smanjio rast gljivičnih hifa za 9,9–53,4%. U eksperimentima u saksiji, NP19 je povećao aktivnost peroksidaze (POD) i superoksid dismutaze (SOD) za 6,1% do 63,0% i 3,0% do 67,7%, respektivno, što ukazuje na poboljšane odbrambene mehanizme biljaka. U poređenju sa neinficiranim NP19 kontrolama, biljke riže zaražene NP19 pokazale su povećanje sadržaja pigmenata za 0,3%–24,7%, broja punih zrna po metlici za 4,1%, prinosa punih zrna za 26,3%, indeksa mase prinosa za 34,4% i sadržaja aromatičnog spoja 2-acetil-1-pirolina (2AP) za 10,1%. Kod biljaka riže zaraženih i NP19 i hobotnicom, povećanja su iznosila 0,2%–49,2%, 4,6%, 9,1%, 54,4% i 7,5%. Poljski eksperimenti su pokazali da su biljke riže kolonizirane i/ili inokulirane NP19 pokazale povećanje broja punih zrna po metlici za 15,1–27,2%, prinosa punog zrna za 103,6–119,8% i sadržaja 2AP za 18,0–35,8%. Ove biljke riže su također pokazale veću aktivnost SOD-a (6,9–29,5%) u poređenju sa biljkama riže zaraženim plamenjačom koje nisu inokulirane sa NP19. Folijarna primjena NP19 nakon infekcije usporila je napredovanje lezija. Stoga se pokazalo da je K. oryziphila NP19 potencijalni bioagens koji podstiče rast biljaka i biopesticid za kontrolu plamenjače riže.
Međutim, na efikasnost fungicida utiču mnogi faktori, uključujući formulaciju, vrijeme i način primjene, težinu bolesti, efikasnost sistema za predviđanje bolesti i pojavu sojeva otpornih na fungicide. Nadalje, upotreba hemijskih fungicida može uzrokovati rezidualnu toksičnost u okolišu i predstavljati zdravstveni rizik za korisnike.
U eksperimentu s posudama, sjeme riže je površinski sterilizirano i proklijalo kao što je gore opisano. Zatim je posijano s K. oryziphila NP19 i presađeno u posude za sadnice. Sadnice su inkubirane 30 dana kako bi se omogućilo da sadnice riže izniknu. Sadnice su zatim presađene u posude. Tokom procesa presađivanja, biljke riže su gnojene kako bi se pripremile za infekciju gljivicom koja uzrokuje rižinu pegavost i kako bi se testirala njihova otpornost.
U poljskom eksperimentu, proklijalo sjeme zaraženo sa Aspergillus oryzae NP19 tretirano je korištenjem gore opisane metode i podijeljeno u dvije grupe: sjeme zaraženo sa Aspergillus oryzae NP19 (RS) i nezaraženo sjeme (SAD). Proklijalo sjeme je posađeno u posude sa steriliziranom zemljom (mješavina zemlje, spaljene rižine ljuske i stajskog gnojiva u omjeru 7:2:1 po težini) i inkubirano 30 dana.
Suspenzija konidija *K. oryziphila* dodana je u R rižu i nakon 30 sati inkubacije, na isto mjesto dodano je 2 μl *K. oryziphila* NP19. Sve Petrijeve zdjelice su inkubirane na 25°C u mraku tokom 30 sati, a zatim pod kontinuiranim osvjetljenjem. Svaka grupa je replicirana tri puta. Nakon 72 sata inkubacije, biljni presjeci su pregledani i podvrgnuti skenirajućem elektronskom mikroskopu. Ukratko, biljni presjeci su fiksirani u fosfatno puferiranom fiziološkom rastvoru koji sadrži 2,5% (v/v) glutaraldehida i dehidrirani u nizu etanolnih rastvora. Uzorci su osušeni na kritičnim tačkama ugljen-dioksidom, zatim presvučeni zlatom i posmatrani pod skenirajućim elektronskim mikroskopom tokom 15 minuta.
Vrijeme objave: 13. okt. 2025.